- Amiloidosis
- Atención Integral en Pediatría y Adolescencia
- Desarrollo e Innovación en Neuromodulación
- Educación en Ingeniería Biomédica
- Enfermedades Poco Frecuentes
- Epidemiología Global
- Hipertensión Arterial
- Informática en Salud
- Ingeniería Biomédica
- Investigación Biomolecular en Enfermedades Infecciosas
- Investigación en Fisiología y Fisiopatología Renal
- Investigación Traslacional en Hepatología
- Investigación Traslacional en Microbioma
- Laboratorio de Cirugía Asistida por Computadora
- Laboratorio de Nichos Celulares Patológicos y de Ingeniería de Tejidos
- Medicina de Precisión
- Medicina Traslacional en Diabetes y Trasplante
- Neoplasia Endocrina Múltiple
- Pro.Can.He. (Programa de Cáncer Hereditario)
Laboratorio de Investigación Biomolecular en Enfermedades Infecciosas
Director del grupo
Ruybal, Paula (CIC CONICET)
Integrantes
Risso, Marikena (CIC CONICET)
Lauthier, Juan José (CIC CONICET)
Jaimes Caro, Elkin Johan (Beca inicial Agencia I+D+i)
Quintero, Wendy (Beca interna doctoral CONICET)
Quintero, Wendy (Beca interna doctoral CONICET)
Parra, Carlos (Estudiante de Maestría en Biología Molecular Médica, UBA)
Insfrán Valdez, Mariela Noemí (Estudiante de Maestría en Biología Molecular Médica, UBA)
Salgueiro Díaz, Victoria (Estudiante de grado Universidad Nacional de San Martín)
Salgueiro Díaz, Victoria (Estudiante de grado Universidad Nacional de San Martín)
Juarez, Florencia (Estudiante de grado Universidad Nacional de San Martín)
Ortiz, Josefina (Estudiante de Ingeniería Biomédica, Universidad Hospital Italiano de Buenos Aires)
Estudiantes de grado formados en el laboratorio
Giuliana Saggión (Tesis de grado, Universidad Nacional de San Martín)
Juan José Niño (Práctica profesional, Universidad Industrial de Santander, Colombia)
Sarmiento, Angelica (Práctica profesional, Universidad Industrial de Santander, Colombia)
Casas Carvajal, Paula Camila (Estudiante de grado, Universidad Industrial de Santander, Colombia)
Erick Diogo Ribeiro (Estudiante de Medicina, Universidad del Hospital Italiano de Buenos Aires)
Descripción de la línea de investigación
Epidemiología molecular, genómica y diagnóstico de enfermedades infecciosas desde una perspectiva One Health
El Laboratorio de Investigación Biomolecular en Enfermedades Infecciosas (LIBEI) desarrolla investigación básica, aplicada y traslacional orientada al estudio de enfermedades infecciosas de relevancia para la salud humana, animal y ambiental.
Nuestro objetivo es comprender la diversidad genética, la dinámica epidemiológica y los mecanismos biológicos de los agentes infecciosos, así como desarrollar y transferir herramientas moleculares que contribuyan al diagnóstico, la vigilancia y el control de estas enfermedades.
Las actividades del laboratorio integran biología molecular, genómica, bioinformática y epidemiología molecular mediante una amplia red de colaboración con hospitales, universidades, institutos de investigación y organismos públicos nacionales e internacionales.
Investigación básica
Orientada a generar conocimiento sobre la diversidad genética, la evolución y la estructura poblacional de agentes infecciosos mediante herramientas moleculares y genómicas de alta resolución.
Orientada a generar conocimiento sobre la diversidad genética, la evolución y la estructura poblacional de agentes infecciosos mediante herramientas moleculares y genómicas de alta resolución.
Las principales áreas incluyen:
– Diversidad genética intra e interespecífica de parásitos de importancia médica.
– Epidemiología molecular y reconstrucción filogenética.
– Genómica comparada y análisis bioinformático.
– Identificación de variantes y marcadores moleculares de relevancia biológica.
– Estudio de asociaciones entre diversidad genética, manifestaciones clínicas y respuesta al tratamiento.
– Biodiversidad parasitaria y estudios ecológicos de parásitos ambientales.
– Diversidad genética intra e interespecífica de parásitos de importancia médica.
– Epidemiología molecular y reconstrucción filogenética.
– Genómica comparada y análisis bioinformático.
– Identificación de variantes y marcadores moleculares de relevancia biológica.
– Estudio de asociaciones entre diversidad genética, manifestaciones clínicas y respuesta al tratamiento.
– Biodiversidad parasitaria y estudios ecológicos de parásitos ambientales.
Investigación aplicada y traslacional
Orientada al desarrollo, validación e implementación de herramientas que contribuyan a la resolución de problemas concretos en salud humana y veterinaria.
Las principales áreas incluyen:
– Desarrollo y optimización de métodos de diagnóstico molecular.
– Caracterización genética y tipificación molecular de patógenos.
– Vigilancia molecular de enfermedades parasitarias y zoonóticas.
– Identificación de marcadores asociados a diagnóstico, pronóstico y respuesta terapéutica.
– Transferencia tecnológica y servicios especializados de diagnóstico molecular.
– Formación de recursos humanos en biología molecular, genómica y bioinformática.
– Caracterización genética y tipificación molecular de patógenos.
– Vigilancia molecular de enfermedades parasitarias y zoonóticas.
– Identificación de marcadores asociados a diagnóstico, pronóstico y respuesta terapéutica.
– Transferencia tecnológica y servicios especializados de diagnóstico molecular.
– Formación de recursos humanos en biología molecular, genómica y bioinformática.
Líneas específicas de trabajo
Leishmaniasis
Estudio de Leishmania spp. mediante herramientas de diagnóstico molecular, secuenciación, genómica y epidemiología molecular. Las investigaciones incluyen la identificación de especies, caracterización de variantes genéticas, análisis filogenéticos, vigilancia molecular y evaluación de asociaciones entre diversidad genética, manifestaciones clínicas y respuesta al tratamiento.
Estudio de Leishmania spp. mediante herramientas de diagnóstico molecular, secuenciación, genómica y epidemiología molecular. Las investigaciones incluyen la identificación de especies, caracterización de variantes genéticas, análisis filogenéticos, vigilancia molecular y evaluación de asociaciones entre diversidad genética, manifestaciones clínicas y respuesta al tratamiento.
Estrongiloidiasis
Caracterización molecular y genómica de Strongyloides stercoralis en humanos y animales. Esta línea incluye el desarrollo de herramientas diagnósticas, estudios de diversidad genética, análisis filogenéticos, epidemiología molecular y evaluación de potenciales marcadores asociados a persistencia de la infección y respuesta terapéutica.
Caracterización molecular y genómica de Strongyloides stercoralis en humanos y animales. Esta línea incluye el desarrollo de herramientas diagnósticas, estudios de diversidad genética, análisis filogenéticos, epidemiología molecular y evaluación de potenciales marcadores asociados a persistencia de la infección y respuesta terapéutica.
Toxoplasmosis
Caracterización genética y molecular de Toxoplasma gondii mediante estrategias de tipificación molecular, análisis filogenéticos y estudios de diversidad genética orientados a comprender la circulación de variantes parasitarias de importancia epidemiológica.
Caracterización genética y molecular de Toxoplasma gondii mediante estrategias de tipificación molecular, análisis filogenéticos y estudios de diversidad genética orientados a comprender la circulación de variantes parasitarias de importancia epidemiológica.
Brucella canis y otras zoonosis
Aplicación de herramientas moleculares para la caracterización genética y epidemiológica de agentes zoonóticos de importancia sanitaria, contribuyendo a la vigilancia y comprensión de sus mecanismos de transmisión.
Aplicación de herramientas moleculares para la caracterización genética y epidemiológica de agentes zoonóticos de importancia sanitaria, contribuyendo a la vigilancia y comprensión de sus mecanismos de transmisión.
Parásitos ambientales y biodiversidad parasitaria
Estudio de la diversidad, distribución y evolución de organismos parasitarios presentes en distintos ecosistemas mediante enfoques integrados de parasitología, ecología, sistemática y biología molecular.
Estudio de la diversidad, distribución y evolución de organismos parasitarios presentes en distintos ecosistemas mediante enfoques integrados de parasitología, ecología, sistemática y biología molecular.
Áreas transversales
Todas las líneas de investigación del laboratorio se desarrollan mediante un enfoque interdisciplinario que integra:
– Diagnóstico molecular.
– Epidemiología molecular.
– Genómica y secuenciación.
– Bioinformática.
– Filogenia y evolución molecular.
– Vigilancia genómica.
– Salud humana, animal y ambiental (One Health).
– Transferencia tecnológica y vinculación con el sistema de salud.
Todas las líneas de investigación del laboratorio se desarrollan mediante un enfoque interdisciplinario que integra:
– Diagnóstico molecular.
– Epidemiología molecular.
– Genómica y secuenciación.
– Bioinformática.
– Filogenia y evolución molecular.
– Vigilancia genómica.
– Salud humana, animal y ambiental (One Health).
– Transferencia tecnológica y vinculación con el sistema de salud.
Publicaciones destacadas
– Risso MG, Quintero-Garcia WL, Lauthier JJ, Saggion G, Parra C, Gauder C, Astudillo G, Echazarreta S, Foccoli MB, Pisarevsky AA, Repetto SA, Ruybal P. An integrated molecular approach for the detection and species-level identification of Leishmania spp. in clinical samples. Microbiol Spectr. 2026 Apr 20:e0366525. doi: 10.1128/spectrum.03665-25.
– Petrucelli JV, Borrás P, Jiménez Y, Samaniego G, Ruybal P, Hodžić A. The first clinical case of Hepatozoon felis infection in a cat from Panama. Vet Parasitol Reg Stud Reports. 2026 May;70:101480. doi: 10.1016/j.vprsr.2026.101480.
– Boeri EJ, Becker P, Akiyama SN, Dominguez ML, Elena S, Fernandez NM, Ruybal P, Escobar GI, Hasan DB, Trangoni MD. MLVA_5: A reduced marker scheme for phylogeographic analysis of Brucella canis. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2026 Mar;126:102441. doi: 10.1016/j.cimid.2026.102441.
– Bagnato E, Lauthier JJ, Brook F, Martin GM, Digiani MC. Natural life cycle and molecular characterization of Taenia talicei Dollfus, 1960 (Cestoda: Taeniidae) from northwestern Patagonia, Argentina. Int J Parasitol Parasites Wildl. 2024 Dec 24;26:101035. doi: 10.1016/j.ijppaw.2024.101035.
– Moya Alvarez A, Arreguez ML, Uncos RE, Uncos DA, Pereyra WR, Ramos F, Lauthier JJ, Nina L, Mejía Montaño E, Hashiguchi Y, Korenaga M, Barroso PA, Marco JD. Leishmania pyruvate kinase and mitochondrial processing protease: Two novel vaccine candidates, selected via a seroproteomic approach, trigger a protective immune response against murine cutaneous leishmaniasis. Med Microbiol Immunol. 2025 Sep 3;214(1):41. doi: 10.1007/s00430-025-00849-9.
– Davies C, Lauthier JJ, Renfijes MM, Cruz IG, Davies D. Life-History Traits and Genetic Characterization of Polystoma borellii (Monogenea, Polystomatidae), a Parasite of Pleurodema borellii (Anura, Leptodactylidae). Parasitologia. Basilea: Multidisciplinary Digital Publishing Institute. 2025 vol.5 n°2. p – eissn 2673-6772
– Davies C, Lauthier JJ, Renfijes MM, Cruz IG, Davies D. Life-History Traits and Genetic Characterization of Polystoma borellii (Monogenea, Polystomatidae), a Parasite of Pleurodema borellii (Anura, Leptodactylidae). Parasitologia 2025, 5, 17. doi: 10.3390/parasitologia5020017
– Bagnato E, Lauthier JJ, Brook F, Martin GM, Digiani MC. Natural life cycle and molecular characterization of Taenia talicei Dollfus, 1960 (Cestoda: Taeniidae) from northwestern Patagonia, Argentina. Int J Parasitol Parasites Wildl. 2024 Dec 24;26:101035. doi: 10.1016/j.ijppaw.2024.101035.
– Hjelt V, Goldman A, Martin V, Ruybal P, Moretta R. Tandem repeats in the genome of Toxoplasma gondii display compositional bias that impacts in protein structure. Gene. 2024 Jul 16;928:148774. doi: 10.1016/j.gene.2024.148774.
– Guzman ML, Peralta MF, Quipildor M, Papera F, Mejía E, Lauthier JJ, Bono M, Barroso PA, Olivera ME, Carrer DC. A Case of Cutaneous Leishmaniasis Cured by a Combined Treatment of Topical Miltefosine and Injectable Amphotericin B. Precis. Nanomed. 2023 Dec;6(4):1181-1193. doi:10.33218/001c.90983.
– Boeri EJ, Ruybal P, Dominguez ML, Fernandez NM, Becker P, Elena S, Escobar GI, Ayala SM, Hasan DB, Trangoni MD. Higher diversity of Brucella canis in Latin America, according to an MLVA_13 Bc analysis. Acta Trop. 2023 Jul;243:106914. doi:10.1016/j.actatropica.2023.106914.
– Repetto SA, Braghini JQ, Risso MG, Argüello LB, Batalla EI, Stecher DR, Sierra MF, Burgos JM, Radisic MV, González Cappa SM, Ruybal P. Molecular typing of Strongyloides stercoralis in Latin America, the clinical connection. Parasitology. 2022 Jan;149(1):24-34. doi:10.1017/S0031182021001517
– Martínez L, Gilardoni C, Medina C, Lauthier JJ, Cremonte F, Etchegoin J. First molecular identification of the trematode Maritrema bonaerense Etchegoin & Martorelli, 1997 (Plagiorchiida, Microphallidae) from its intermediate hosts, the gastropod Heleobia australis (d’Orbigny, 1835) (Littorinimorpha, Cochliopidae) and the crab Neohelice granulata (Dana, 1851) (Decapoda, Varunidae) in Argentina. Zoosyst. Evol. 2023. 99 (1) 2023, 117–121, doi: 10.3897/zse.99.91381
– Fernández MV, Hamann MI, Davies C, Lauthier JJ, Davies D. First record of Cotylurus metacercariae (Trematoda:Strigeidae) in Biomphalaria straminea (Planorbidae) from Argentina: morphological and molecular identification. Ann Parasitol. 2022;68(3):473-481. doi: 10.17420/ap6803.453.
– Bagnato E, Gilardoni C, Lauthier JJ, Cremonte F. Paramonostomum deseado n. sp. (Digenea: Notocotylidae) parasitizing the South American Black Oystercatcher and their atypical life cycle from the Patagonian coast. Parasitology. 2022 Oct;149(12):1642-1651. doi: 10.1017/S0031182022001159.
– Davies D, Liquin F, Lauthier JJ, Párraga R, Saravia J, Davies C, Ostrowski de Núñez M. The life cycle of Magnivitellinum saltaensis n. sp. (Digenea: Alloglossidiidae) in Salta Province, Argentina. Parasitol Res. 2021 Apr;120(4):1233-1245. doi: 10.1007/s00436-020-07039-x.
– Avila HG, Risso MG, Cabrera M, Ruybal P, Repetto SA, Butti MJ, Trangoni MD, Santillán G, Pérez VM, Periago MV. Development of a New LAMP Assay for the Detection of Ancylostoma caninum DNA (Copro-LAMPAc) in Dog Fecal Samples. Front. Vet. Sci., 12 November 2021. doi:10.3389/fvets.2021.770508
– Avila HG, Risso MG, Ruybal P, Repetto SA, Butti MJ, Trangoni MD, Grune Löffler S, Pérez VM, Periago MV. Development of a low-cost copro-LAMP assay for simultaneous copro-detection of Toxocara canis and Toxocara cati. Parasitology. 2021 Feb 17:1-8. doi:10.1017/S0031182021000342
– Caimi K, Ruybal P. Leptospira spp., a genus in the stage of diversity and genomic data expansion. Infect Genet Evol. 2020 Jul;81:104241. doi:10.1016/j.meegid.2020.104241
– Almazán MC, Copa GN, Lauthier JJ, Gil JF, López Quiroga I, Hoyos CL, Díaz Fernández ME, Nasser JR, Korenaga M, Marco JD, Barroso PA. Sand fly typing: a simple and morphologically-supported method based on polymorphism of 18S rRNA gene in a Leishmaniasis endemic area of Argentina. Acta Trop. 2020 Nov;211:105609. doi: 10.1016/j.actatropica.2020.105609.
– Bracamonte ME, Álvarez AM, Sosa AM, Hoyos CL, Lauthier JJ, Cajal SP, Juarez M, Uncos RE, Sánchez-Valdéz FJ, Acuña L, Diosque P, Basombrío MA, Nasser JR, Hashiguchi Y, Korenaga M, Barroso PA, Marco JD. High performance of an enzyme linked immunosorbent assay for American tegumentary leishmaniasis diagnosis with Leishmania (Viannia) braziliensis amastigotes membrane crude antigens. PLoS One. 2020 May 7;15(5):e0232829. doi: 10.1371/journal.pone.0232829.
– Floridia-Yapur N, Monje-Rumi M, Ragone P, Lauthier JJ, Tomasini N, Alberti D’Amato A, Diosque P, Cimino R, Gil JF, Sanchez DO, Nasser JR, Tekiel V. TcTASV Antigens of Trypanosoma cruzi: Utility for Diagnosis and High Accuracy as Biomarkers of Treatment Efficacy in Pediatric Patients. Am J Trop Med Hyg. 2019 Nov;101(5):1135-1138. doi: 10.4269/ajtmh.18-0936.
– Bott E, López MG, Lammel EM, Carfagna IE, Durante de Isola EL, Ruybal P, Taboga O, Gimenez G, Belaunzarán ML. Cellular localization, cloning and expression of Leishmania braziliensis Phospholipase A1. Microb Pathog. 2020 Apr;141:104010. doi:10.1016/j.micpath.2020.104010
– Lauthier JJ, Ruybal P, Barroso PA, Hashiguchi Y, Marco JD, Korenaga M. Development of a Multilocus sequence typing (MLST) scheme for Pan-Leishmania. Acta Trop. 2020 Jan;201:105189. doi:10.1016/j.actatropica.2019.105189
– Hoyos CL, Quipildor M, Bracamonte E, Lauthier JJ, Cajal P, Uncos A, Korenaga M, Hashiguchi Y, Barroso PA, Marco JD. Simultaneous occurrence of cutaneous and mucocutaneous leishmaniasis caused by different genotypes of Leishmania (Viannia) braziliensis. J Dermatol. 2019 Sep;46(9):e320-e322. doi: 10.1111/1346-8138.14866.
– Copa GN, Almazán MC, Aramayo LV, Krolewiecki AJ, Cajal SP, Juarez M, Lauthier JJ, Korenaga M, Barroso P, Nasser JR, Marco JD, Gil JF. Tegumentary leishmaniasis and sand flies in a border area between Argentina and Bolivia. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2019 Feb 1;113(2):91-100. doi: 10.1093/trstmh/try113.
– Varni V, Chiani Y, Nagel A, Ruybal P, Vanasco NB, Caimi K. Simplified MLST scheme for direct typing of Leptospira human clinical samples. Pathog Glob Health. 2018 Jun;112(4):203-209. doi:10.1080/20477724.2018.1480137
– Moretta R, Sanchez VR, Fenoy IM, Goldman A, Ruybal P, Martin V. Genotyping of Toxoplasma gondii: The advantages of variable number tandem repeats within coding regions. Infect Genet Evol. 2018 Nov;65:226-230. doi:10.1016/j.meegid.2018.07.026
– Repetto SA, Ruybal P, Batalla E, López C, Fridman V, Sierra M, Radisic M, Bravo PM, Risso MG, González Cappa SM, Alba Soto CD. Strongyloidiasis Outside Endemic Areas: Long-term Parasitological and Clinical Follow-up After Ivermectin Treatment. Clin Infect Dis. 2018 May 2;66(10):1558-1565. doi:10.1093/cid/cix1069
– Caimi K, Repetto SA, Varni V, Ruybal P. Leptospira species molecular epidemiology in the genomic era. Infect Genet Evol. 2017 Oct;54:478-485. doi:10.1016/j.meegid.2017.08.013
– Tsuji Y, Aoki N, Yamamoto M, Nakajima H, Nakajima K, Ogino Y, Lauthier JJ, Korenaga M, Kanno y, Sano s. Two Cases with Creeping Disease due to Gnathostomia doloresi. West Dermatology.: West Dermatology. 2017 vol.79 n°. p264 – 268. issn 1880-4047. eissn 0386-9784.
– Repetto SA, Ruybal P, Solana ME, López C, Berini CA, Alba Soto CD, Cappa SM. Comparison between PCR and larvae visualization methods for diagnosis of Strongyloides stercoralis out of endemic area: A proposed algorithm. Acta Trop. 2016 May;157:169-77. doi:10.1016/j.actatropica.2016.02.004
– Varni V, Koval A, Nagel A, Ruybal P, Caimi K, Amadio AF. First Genome Sequence of Leptospira interrogans Serovar Pomona, Isolated from a Bovine Abortion. Genome Announc. 2016 May 19;4(3):e00345-16. doi:10.1128/genomeA.00345-16
– Floridia-Yapur N, Monje Rumi M, Ragone P, Lauthier JJ, Tomasini N, Alberti D’Amato A, Diosque P, Cimino R, Marco JD, Barroso P, Sanchez DO, Nasser JR, Tekiel V. The TcTASV proteins are novel promising antigens to detect active Trypanosoma cruzi infection in dogs. Parasitology. 2016 Sep;143(11):1382-9. doi: 10.1017/S0031182016000822.
– Barroso PA, Nevot MC, Hoyos CL, Locatelli FM, Lauthier JJ, Ruybal P, Cardozo RM, Russo PD, Vassiliades CN, Mora MC, Estévez JO, Hashiguchi Y, Korenaga M, Basombrío MA, Marco JD. Genetic and clinical characterization of canine leishmaniasis caused by Leishmania (Leishmania) infantum in northeastern Argentina. Acta Trop. 2015 Oct;150:218-23. doi:10.1016/j.actatropica.2015.08.007
– Marco JD, Barroso PA, Locatelli FM, Cajal SP, Hoyos CL, Nevot MC, Lauthier JJ, Tomasini N, Juarez M, Estévez JO, Korenaga M, Nasser JR, Hashiguchi Y, Ruybal P. Multilocus sequence typing approach for a broader range of species of Leishmania genus: describing parasite diversity in Argentina. Infect Genet Evol. 2015 Mar;30:308-317. doi:10.1016/j.meegid.2014.12.031
– Davies D, Davies C, Lauthier JJ, Hamann M, Ostrowski de Núñez M. Morphological and ITS2 Molecular Characterization of Ribeiroia Cercariae (Digenea: Psilostomidae) from Biomphalaria spp. (Gastropoda: Planorbidae) in Northern Argentina. J Parasitol. 2015 Oct;101(5):549-55. doi: 10.1645/13-350.1.
Colaboraciones científicas
El grupo realiza colaboraciones enfocadas en el estudio de diferentes patógenos.
Fuentes de financiamiento
– Enfoque integral para el diagnóstico, caracterización y tratamiento de la leishmaniasis en contextos coendémicos con enfermedad de Chagas.
Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, PIET-R 29820250100003CO (2026-2028).
– Plataformas de diagnóstico, tamizaje y tipificación de Leishmania spp.
Agencia Nacional de Promoción de la Investigación, el Desarrollo Tecnológico y la Innovación, PICT-2021-GRF-TII-00216. Investigador Responsable: Dra. Paula Ruybal.
– Análisis multifactorial de las formas clínicas de la estrongiloidosis y estrategias para seguimiento postratamiento.
Agencia Nacional de Promoción de la Investigación, el Desarrollo Tecnológico y la Innovación, PICT-2021-GRF-TII-00176. Investigador Responsable: Dra. Silvia Repetto. Grupo Responsable: Dra. Paula Ruybal, Dra. Catalina Alba Soto.
– Problemáticas asociadas a enfermedades parasitarias desatendidas en el contexto de la inmunosupresión.
Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, PIP 11220200102724CO (2021-2023). Titular del proyecto: Dra. Paula Ruybal, Co-titular: Dra. Silvia Repetto. Grupo de investigadores: Dra. Marikena Risso (IMPaM, UBA-CONICET), Dras. Rosalía Moretta y Valentina Martín (CESyMA, UNSaM) y Dra, Margarita Bisio (INP – Dr. Mario Fatala Chaben).
– Desarrollo y Aplicación de Estrategias de Tipificación Molecular para el Estudio de la Variabilidad Genética de Leishmania spp. en Argentina.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2017-3148 (2018-2021). Investigador Responsable: Dra. Paula Ruybal.
– Tríada hospedero-microbiota-parásito: análisis multifactorial de las formas clínicas de la estrongiloidosis.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2016-0501 (2017-2020). Investigador Responsable: Dra. Silvia Repetto. Grupo Responsable: Dra. Paula Ruybal.
– Estrongiloidosis en Argentina: diversidad poblacional de aislamientos de pacientes sin riesgo de reinfección exógena y seguimiento postratamiento.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2013-0968 (2014-2017). Investigador Responsable: Dra. Stella Maris Gonzalez Cappa. Grupo Responsable: Dra. Paula Ruybal, Dra. María Elisa Solana.
– Aplicación de marcadores moleculares para el estudio epidemiológico de leptospirosis bovina en Argentina.
Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, PIP 11220090100666. (2010-2013). Responsable del proyecto: Dra. Paula Ruybal, Grupo responsable del proyecto: Dra. Karina Caimi.
– Aplicación de marcadores moleculares y microarreglos genómicos para el estudio epidemiológico de Leptospira spp. en la Argentina.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2008-0117. (2010-2013). Responsable del proyecto: Dra. Karina Caimi, Grupo responsable del proyecto: Dra. Paula Ruybal, Dra. Bibiana Brihuega.
– Análisis multifactorial de las formas clínicas de la estrongiloidosis y estrategias para seguimiento postratamiento.
Agencia Nacional de Promoción de la Investigación, el Desarrollo Tecnológico y la Innovación, PICT-2021-GRF-TII-00176. Investigador Responsable: Dra. Silvia Repetto. Grupo Responsable: Dra. Paula Ruybal, Dra. Catalina Alba Soto.
– Problemáticas asociadas a enfermedades parasitarias desatendidas en el contexto de la inmunosupresión.
Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, PIP 11220200102724CO (2021-2023). Titular del proyecto: Dra. Paula Ruybal, Co-titular: Dra. Silvia Repetto. Grupo de investigadores: Dra. Marikena Risso (IMPaM, UBA-CONICET), Dras. Rosalía Moretta y Valentina Martín (CESyMA, UNSaM) y Dra, Margarita Bisio (INP – Dr. Mario Fatala Chaben).
– Desarrollo y Aplicación de Estrategias de Tipificación Molecular para el Estudio de la Variabilidad Genética de Leishmania spp. en Argentina.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2017-3148 (2018-2021). Investigador Responsable: Dra. Paula Ruybal.
– Tríada hospedero-microbiota-parásito: análisis multifactorial de las formas clínicas de la estrongiloidosis.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2016-0501 (2017-2020). Investigador Responsable: Dra. Silvia Repetto. Grupo Responsable: Dra. Paula Ruybal.
– Estrongiloidosis en Argentina: diversidad poblacional de aislamientos de pacientes sin riesgo de reinfección exógena y seguimiento postratamiento.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2013-0968 (2014-2017). Investigador Responsable: Dra. Stella Maris Gonzalez Cappa. Grupo Responsable: Dra. Paula Ruybal, Dra. María Elisa Solana.
– Aplicación de marcadores moleculares para el estudio epidemiológico de leptospirosis bovina en Argentina.
Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, PIP 11220090100666. (2010-2013). Responsable del proyecto: Dra. Paula Ruybal, Grupo responsable del proyecto: Dra. Karina Caimi.
– Aplicación de marcadores moleculares y microarreglos genómicos para el estudio epidemiológico de Leptospira spp. en la Argentina.
Agencia Nacional de Promoción Científica y Tecnológica, PICT 2008-0117. (2010-2013). Responsable del proyecto: Dra. Karina Caimi, Grupo responsable del proyecto: Dra. Paula Ruybal, Dra. Bibiana Brihuega.